Bloedtypes zijn classificaties van erfelijke soortspecifieke antigenen op het oppervlak van rode bloedcellen. Bij de hond worden zeven bloedgroepen herkend en bij de kat vier bloedgroepen. Andere cellen zoals leukocyten, bloedplaatjes, of cellen in andere weefsels kunnen deze antigenen ook delen. Allo-antilichamen (of iso-antilichamen) zijn antilichamen die in het serum aanwezig zijn tegen een antigeen van een ander dier van dezelfde soort. Deze kunnen op natuurlijke wijze zijn verkregen (b.v. inname van colostrum) of geïnduceerd door eerdere blootstelling (b.v. transfusie), en hun aanwezigheid wordt vastgesteld door een crossmatch.
Bloedtransfusie kan bij diergeneeskundige patiënten een hele reeks schadelijke gevolgen hebben. Sommige van deze effecten komen vaak voor en kunnen onvermijdelijk zijn (bijv. koorts), maar andere, zoals immuungemedieerde acute en vertraagde transfusiereacties die direct in verband worden gebracht met ongeschikte type- en crossmatchprocessen bij honden en katten, kunnen tot een minimum worden beperkt.
In dit artikel geef ik een overzicht van de bloedtypering bij hond en kat en de juiste crossmatchtechnieken. Ik bied ook aanbevelingen voor dierenartsen om transfusiereacties te helpen voorkomen, en ik bespreek de tekenen die kunnen worden waargenomen als een reactie optreedt.
CANINE BLOEDTYPEN EN ANTIBODEN
Hondenbloedtypen zijn genummerd volgens het hondenerythrocytenantigeen (DEA) systeem.
DEA 1.1, 1.2, en 1.3
DEA 1 was vroeger bekend als A en bestaat uit vier allelen: negatief, 1.1, 1.2, en 1.3. DEA 1.1 vererft als een autosomaal dominante eigenschap over DEA 1.2, en het nultype is recessief voor beide. DEA 1.1 en DEA 1.2 zijn de belangrijkste antigenen en komen samen voor bij ongeveer 60% van de honden.1 Er kan verwarring ontstaan omdat beide types als A positief worden beschouwd; DEA 1.2 honden, die 7% tot 29% van de honden uitmaken, zullen echter krachtige anti-DEA 1.1 antilichamen ontwikkelen zodra ze getransfundeerd worden met DEA 1.1 cellen.
Terwijl natuurlijk voorkomende antilichamen tegen deze antigenen over het algemeen als niet-bestaand worden beschouwd, kunnen de eerste transfusies met DEA 1.1 bloed worden geassocieerd met een verminderde circulerende levensduur van de getransfundeerde cellen, en latere transfusies zullen worden geassocieerd met een acute hemolytische reactie. Transfusie van DEA 1.2 bloed aan een gesensibiliseerde DEA-negatieve hond zal resulteren in een exponentieel verlies van cellen in de loop van enkele weken, waarbij ongeveer de helft van de getransfundeerde cellen verloren gaat binnen de eerste 10 dagen.2 DEA 1.3 is alleen bekend bij honden uit Australië, voornamelijk Duitse herders.3
DEA 4
DEA 4 komt voor bij maximaal 98% van de honden, en honden met alleen dit type worden beschouwd als universele donoren. Slechts ongeveer 75% van de Doberman pinschers zijn DEA 4 positief. Natuurlijk voorkomende antilichamen tegen DEA 4 zijn niet bekend; wel kunnen hemolytische transfusiereacties optreden na sensibilisatie met DEA 4 positieve bloedtransfusies bij honden die dat antigeen niet hebben.4
DEA 3 en 5
DEA 3 en 5 komen in mindere mate voor bij de hondenpopulatie, maar DEA 3 komt voor bij 23% van de windhonden, en 30% van de windhonden is DEA 5 positief. Natuurlijk voorkomend antilichaam is aanwezig in 20% van DEA 3 negatieve honden en 10% van DEA 5 negatieve honden in de Verenigde Staten.2
DEA 7
DEA 7 is aanwezig in 8% tot 45% van de Amerikaanse honden. Natuurlijk voorkomende antilichamen zijn waargenomen tegen DEA 7, met een vertraagde transfusiereactie die de verminderde levensduur van getransfundeerde cellen veroorzaakt, maar geen hemolyse.5,6 Hoewel er controverse bestaat over het belang van het antigeen, is het het beste om het voortijdige verlies van getransfundeerde cellen te vermijden door donorbloed te gebruiken dat dit antigeen ontbeert.
Dal antigeen
Een nieuw antigeen werd in 2007 gemeld en bleek aanwezig te zijn in ongeveer 93% van de honden in de V.S..7 Het werd tijdelijk Dal genoemd omdat het indexgeval een dalmatiër betrof. De Dalmatiër was getypeerd als DEA 1.1, 3, 4, en 5 positief en DEA 7 negatief, maar werd gesensibiliseerd na meerdere transfusies voor chronisch nierfalen met bloed dat alleen als DEA 1.1, 4 positief was getypeerd. Omdat extra transfusies nodig waren, was een compatibiliteitstest nodig. Grote kruisingen tussen de indexhond en 55 niet-Dalmatische donors die compatibel hadden moeten zijn op basis van de types DEA 1.1, 1.2, 3, 4, 5, en 7 waren niet compatibel. Belangrijke kruisingen tussen de indexhond en slechts 20 van de 25 (80%) onverwante Dalmatische Honden waren compatibel. Incompatibele transfusies met dit antigeen kunnen leiden tot acute en vertraagde hemolytische reacties. Wanneer transfusies nodig zijn voor gesensibiliseerde Dalmatische Honden, lijkt het erop dat compatibele donors het meest waarschijnlijk binnen het Dalmatische ras gevonden zullen worden.
Andere antigenen
Er is weinig bekend over DEA 6 en 8 en over 11 andere antigenen waarvan gedacht wordt dat ze bestaan omdat er geen typesera voor deze antigenen beschikbaar zijn. Zonder het typeren van sera voor deze antigenen kon hun relatie met Dal niet worden bepaald.
FELINE BLOEDTYPEN EN ANTIBODEN
Bij katten is alleen het AB-systeem routinematig erkend en bestaat uit drie typen: A, B, en AB.
Type A is het meest voorkomende en komt voor bij meer dan 95% van de tamme kortharige en langharige katten in de Verenigde Staten. Tot op heden zijn alle Siamezen, Burmezen, Tonkinezen, Russisch blauw, Amerikaanse kortharen en Oosterse kortharen geïdentificeerd als type A.8-10 Type B is geïdentificeerd bij maximaal 10% van de Maine coon en Noorse boskatten; tot 20% van de Abessijner, Birmaan, Pers, Somali, Sphinx, en Schotse vouwkatten; en tot 45% van de exotische en Britse korthaar, Cornish rex, en Devon rex katten. Type AB is waargenomen bij huiskatten en ook bij rassen met type B.11
Dit bloed systeem volgt eenvoudige Mendeliaanse overerving waarbij het A (A) gen domineert over het AB (ab) gen, dat domineert over het B (b) gen. Type A katten kunnen een van de drie genotypes hebben: A-A, A-ab, of A-b. Katten van het type AB kunnen zowel een ab-ab als een ab-b genotype hebben, en een kat van het type B kan alleen het b-b genotype hebben. Aldus kan een fokpaar van type A katten kittens voortbrengen van type A, AB, of B, afhankelijk van hun fenotype.
In tegenstelling tot honden hebben katten duidelijke, natuurlijk voorkomende antilichamen. Alle type B kittens ontwikkelen antilichamen binnen een paar weken na de geboorte, en hoge titers ontwikkelen zich tegen de leeftijd van drie maanden.12 Als gevolg hiervan zullen type B poezen sterke anti-A antilichamen in hun colostrum hebben zonder enige voorafgaande blootstelling door zwangerschap of transfusie. Type A kittens zullen ook antilichamen ontwikkelen, maar deze worden over het algemeen als minder krachtig beschouwd. Aangezien antilichamen tot 16 uur na de geboorte via het colostrum op een kitten kunnen worden overgedragen, kunnen kittens die gezond geboren worden, plotseling aan de hemolytische anemie die zich ontwikkelt, lijden. Deze hemolytische anemie komt over het algemeen voor bij type A of AB kittens geboren uit B poezen gepaard met type A toms.13
Katten van het type AB worden beschouwd als universele ontvangers, omdat zij geen anti-A en anti-B antilichamen hebben; zij moeten echter getransfundeerd worden met type A cellen om te voorkomen dat zij per ongeluk krachtige anti-A antilichamen transfuseren van een type B donor, hetgeen een voorbeeld is van een kleine bijwerking. Door de effecten van geografie en ras op de frequentie van bloedgroepen, kan het risico van het induceren van een mogelijk fatale transfusiereactie bij ontvangers van bloedgroep B oplopen tot 20% bij het transfuseren van niet-gematcht bloed.
Mik-antigeen
Een nieuw antigeen, Mik, werd in 2007 gemeld en is aanwezig bij veel huiskatten.14 Katten die dit antigeen niet hebben (ongeveer 6% van de geteste katten) kunnen een acute hemolytische reactie ontwikkelen na transfusie van AB gematcht bloed. Aangezien er geen serum beschikbaar is om het Mik antigeen te typeren en antilichamen van nature lijken voor te komen, is het verstandig om zelfs type-gematchte katten vóór een transfusie te kruisen.
BLOEDTYPING EN CROSSMATCHING
Vers afgenomen bloed in EDTA en een stolsel of gewone buis van zowel de ontvanger als de donor worden aanbevolen voor typering en kruisproef, tenzij de donor al eerder op antilichamen is gescreend, in welk geval alleen donorcellen van het EDTA-monster nodig zijn. Als alternatief kunnen buissegmenten (“pigtails”) (figuur 1) van de donoreenheid worden gebruikt, zolang de steriliteit van de eenheid intact blijft. De monsters moeten vrij zijn van hemolyse en lipemie.
Figuur 1. “Pigtails” van de donoreenheid mogen gebruikt worden voor bloedgroepbepaling en voor kruisproef met de ontvanger zolang de steriliteit van de eenheid intact blijft. (Foto door Charlie Kerlee.)
Commerciële bloedtypekits zijn beschikbaar voor honden en katten en kunnen gebruikt worden om potentià “le donors te screenen en om de juiste selecties te maken voor kruisproef en transfusies op basis van de bloedgroep van de ontvanger. Voorbeelden zijn typeringskaarten (DMS Laboratories) en een immunochromatografisch patroon (Alvedia) (tabel 1). Deze kits typeren alleen voor DEA 1.1 bij honden en voor A, B, en AB bij katten. Zowel de kaarten als het patroon zijn betrekkelijk eenvoudige typeringsmethoden, die slechts enkele minuten in beslag nemen, en een middel bevatten om een autocontrole uit te voeren om mogelijke interferentie door autoagglutinatie op te sporen. Bij gebruik van een 2+ agglutinatie-eindpuntreactie voor de kaarten werden in één studie drie fout-negatieve en vijf fout-positieve reacties verkregen uit 88 geteste hondenmonsters.15 Dit probleem is naar verluidt gecorrigeerd.16 In dezelfde studie leverde de cartridge geen fout-negatieve en zes fout-positieve resultaten op. Een gelkolomdiffusietest (DiaMed) die in die studie werd gebruikt, is niet langer beschikbaar voor de veterinaire markt.
Tabel 1: Geselecteerde websites over bloedtypering en bloedproducten
Er kunnen foutieve resultaten worden verkregen als de instructies van de kit niet worden opgevolgd. Auto-agglutinatie en kruisbesmetting door eerder gebruikte roerstaafjes kunnen fout-positieve resultaten veroorzaken bij kaarttyperingsmethoden. Vals negatieve resultaten kunnen worden verkregen met bloed van extreem anemische dieren (PCV < 10%) en door een prozonereactie (teveel antilichaam voor de hoeveelheid aanwezig antigeen).17
Een recente studie suggereert dat een meer grondige, uitgebreide typeringskit beschikbaar kan komen die voor DEA 1.1, 3, 4, en 7 en Dal kan typen.18 Een geschikte verdunning voor het DEA 1.2 typeringsreagens werd niet geïdentificeerd, en DEA 5 werd niet opgenomen. In deze studie ontvingen 10 honden DEA 1.1 compatibele transfusies en werden voor en na de transfusies gekruist. Zes van de crossmatch koppelingen bij vier van de honden konden antilichamen hebben ontwikkeld op basis van de typeringsresultaten, en vier crossmatches waarbij twee honden betrokken waren, werden 21 tot 23 dagen later incompatibel met reactiesterktes variërend van 3+ tot 4+. Een derde hond had een 1+ incompatibiliteit op dag 13 die compatibel werd op dag 50. Van vijf crossmatch-paren bij vier honden werd op basis van de uitgebreide typeringsresultaten niet verwacht dat ze antilichamen zouden ontwikkelen; er werden echter belangrijke incompatibele crossmatch-resultaten verkregen, variërend in sterkte van 1+ tot 3+ in de loop van twee tot vier weken. Deze incompatibele resultaten wijzen op sensibilisatie voor antigenen die niet door het typeringsproces zijn opgespoord (b.v. DEA 5, 6, 8).
Zelfs al zijn deze typeringsmethoden betrekkelijk eenvoudig, lees de bijsluiters grondig voor bronnen van mogelijk foutieve resultaten en volg de instructies precies op. Wanneer bevestigingstests nodig zijn, zoals voor het selecteren van permanente donors, voor het controleren van twijfelachtige resultaten, of in plaats van interne typering voor electieve operaties, kan gebruik worden gemaakt van externe laboratoria zoals Animal Blood Resources International in Stockbridge, Mich., of het Hematologie- en Transfusielaboratorium van de Universiteit van Pennsylvania. De optie van de uitgebreide bloedtyperingskit kan deze mogelijkheden uitbreiden tot andere testplaatsen.
Een belangrijke crossmatch test op detecteerbare natuurlijk voorkomende of geïnduceerde antilichamen in het ontvangende serum tegen donorerytrocyten. Deze test moet worden uitgevoerd wanneer het waarschijnlijk is dat een patiënt relevante natuurlijk voorkomende antilichamen (katten) heeft, als de transfusieanamnese van de patiënt onbekend is, of als een transfusie ten minste twee tot vier dagen eerder heeft plaatsgevonden, zelfs als dat met dezelfde donor was.1,8,19,20 In de handel verkrijgbare crossmatchkits zijn verkrijgbaar bij DMS Laboratories.
Een minder belangrijke crossmatch test of detecteerbare antilichamen aanwezig zijn in het donorplasma of -serum tegen de erytrocyten van de patiënt. Hoewel dit als minder belangrijk wordt beschouwd, komen kleine nevenreacties af en toe voor. Permanente donors kunnen worden geselecteerd op basis van in de handel verkrijgbare bloedtyperingsreagentia en screening op antilichamen, teneinde de kans op een kleine bijwerking zo klein mogelijk te maken. De typerings- en crossmatchkits bieden meestal controles om vals-positieve reacties als gevolg van autoagglutinatie uit te sluiten of beweren dat er geen interferentie van is.
Een diakruisproef is een ruwe methode van kruisproef die alleen voor noodsituaties mag worden gebruikt. In dit geval bestaat de belangrijkste objectglaasjeskruisproef uit het mengen van twee druppels plasma van de ontvanger met een druppel bloed van de donor bij kamertemperatuur op een schoon glasplaatje en het observeren op agglutinatie terwijl het glaasje gedurende een minuut wordt rondgedraaid. Een kleine crossmatch kan op dezelfde manier worden uitgevoerd met twee druppels donorplasma en één druppel bloed van de ontvanger. Bij deze methode kunnen echter twee potentieel ernstige fouten optreden. Ten eerste kunnen potentieel fatale hemolytische reacties worden gemist omdat hemolyse met deze methode moeilijk te herkennen is. Ten tweede kan deze procedure prozonereacties missen waarbij de aanwezigheid van een teveel aan antilichaam voor de hoeveelheid antigeen kan resulteren in het mislukken van de agglutinatie.
DETEKEN VAN EEN TRANSFUSIEREACTIE
Een acute intravasculaire hemolytische transfusiereactie kan optreden bij katten van type B die bloed van type A toegediend krijgen. Een ernstige reactie treedt meestal op bij honden die eerder gesensibiliseerd zijn voor DEA 1.1 bloed, maar is ook gemeld bij honden die gesensibiliseerd zijn voor DEA 4, Dal, of een niet-geïdentificeerd type (niet-DEA 1.1, 1.2, 3, 4, 5, 7).1,4,5,7 De symptomen van acute hemolytische transfusiereacties beginnen meestal onmiddellijk na het begin van de transfusie en kunnen onder meer bestaan uit koorts, veranderde hartslag, hypotensie, dyspneu, verlies van controle over blaas en darmen, braken, hemoglobinemie, en hemoglobinurie.21 Omdat de getransfundeerde cellen hemolyse ondergaan, stijgt het packed cell volume (PCV) niet. Gevolgen kunnen zijn: gedissemineerde intravasculaire stolling, nierfalen, shock en overlijden. De ernst van de reactie hangt samen met de antilichaamtiter en de hoeveelheid getransfundeerd bloed. Indien behalve koorts nog andere verschijnselen worden waargenomen, moet de transfusie worden stopgezet en moet de juiste therapie worden gestart.
De halveringstijd van type-compatibel bloed toegediend aan honden en katten is ongeveer drie en vijf weken, respectievelijk. Vertraagde transfusiereacties zijn sluwer dan acute reacties en kunnen over het hoofd worden gezien of worden toegeschreven aan andere gebeurtenissen, zoals een antibiotica-gerelateerde allergie. In deze gevallen kan het PCV stijgen zoals verwacht en vervolgens in de loop van enkele dagen tot weken dalen. Aangezien de hemolyse extravasculair is, kunnen icterus en hyperbilirubinurie worden waargenomen.
Een eerste transfusie van type B bij een kat van type A kan leiden tot een vertraagde hemolytische reactie. Vertraagde reacties kunnen ook optreden bij honden die voor de eerste keer DEA 1.1 of DEA 7 bloed ontvangen dat negatief is voor deze antigenen, alsmede bij honden die eerder gesensibiliseerd zijn voor zwakkere antigenen. Donors die als DEA 1-negatief worden beschouwd, kunnen in feite DEA 1.2 zijn als men alleen vertrouwt op de resultaten van de interne typeringskit. Idealiter zouden permanente donors, indien mogelijk, een volledige typering en antilichaamscreening moeten ondergaan. De interne DEA 1.1 typeringskits moeten gereserveerd worden voor het screenen van potentiële donoren en het typeren van ontvangers die onmiddellijk een transfusietherapie nodig hebben.
Een hond die bloedgroep-gematched is voor DEA 1.1 kan nog steeds mismatched zijn voor een van de andere antigenen. Universele donors zouden alleen positief moeten zijn voor DEA 4 omdat dit een algemeen antigeen is en alleen sensibilisatie zal induceren bij de zeldzame hond die het niet heeft. Het is echter belangrijk te onthouden dat van universeel donorbloed alleen bekend is dat het negatief is voor DEA 1.1, 1.2, 3, 5, en 7. De ongrijpbare DEA 6 en 8 en verscheidene andere antigenen waarvoor geen testsera bestaan, kunnen aanwezig zijn op erytrocyten van universele donors en kunnen een ontvanger die negatief is voor één of meer van die antigenen sensibiliseren. Het Dal-antigeen moet ook in gedachten worden gehouden bij het transfuseren van Dalmatiërs.
GIDS VOOR HET TYPEN EN CROSSMATCHEN VAN HONDEN
Crossmatching detecteert mogelijk geen lage antilichaamconcentraties of voorspelt niet het potentieel om antilichamen te ontwikkelen tegen verkeerd gematcht bloed. Herhaalde transfusies kunnen in sommige praktijken zeldzaam zijn, maar in praktijken met een groot aantal patiënten met chronische nierziekte of die chemotherapie krijgen, of met hardnekkige eigenaars die vechten tegen hardnekkige immuungemedieerde hemolytische anemie bij hun huisdieren, zijn herhaalde transfusies niet ongebruikelijk. In deze gevallen waarin meerdere transfusies worden verwacht, kan donorselectie op basis van bloedgroep de effectiviteit van de transfusie maximaliseren.
Tabel 2: Proces voor het typeren en kruisen van honden
Het volgen van een paar eenvoudige stappen (tabel 2) kan u helpen beslissen of een eenvoudige DEA 1.1 typering voldoende is of dat een meer volledige typering nodig is en of het kruisen van honden om transfusiereacties en sensibilisatie voor getransfundeerd bloed te minimaliseren noodzakelijk is. Kort samengevat is DEA 1.1 type-gematcht bloed voldoende voor een ontvanger die voor het eerst een onmiddellijke transfusiebehandeling nodig heeft. Zelfs als er sensibilisatie optreedt, wegen de voordelen van de transfusie waarschijnlijk op tegen de verkorte halfwaardetijd van de getransfundeerde cellen. Universeel donorbloed wordt aanbevolen als eerste keus wanneer dat mogelijk is en zeker wanneer herhaalde transfusies te verwachten zijn. Kruisproef bij een eerste (of recente) ontvanger heeft geen zin, maar is vereist als de ontvanger vier of meer dagen eerder een transfusie heeft ontvangen of een Dalmatiër is. Gemeenschappelijke antigenen die ontbreken bij een gesensibiliseerde ontvanger kunnen het vinden van compatibel donorbloed een uitdaging maken. In deze gevallen is de kans op succes groter bij kruisproef met broers en zussen of donors van hetzelfde ras.
Linda M. Vap, DVM, DACVP
Departement van Microbiologie, Immunologie en Pathologie
College of Veterinary Medicine and Biomedical Sciences
Colorado State University
Fort Collins, CO 80523
1. Hohenhaus AE. Importance of blood groups and blood group antibodies in companion animals. Transfus Med Rev 2004;18(2):117-126.
2. Swisher SN, Young LE, Trabold N. In vitro and in vivo studies of the behavior of canine erythrocyte-isoantibody systems. Ann N Y Acad Sci 1962;97:15-25.
3. Symons M, Bell K. Expansion of the canine A blood group system. Anim Genet 1991;22(3):227-235.
4. Melzer KJ, Wardrop KJ, Hale AS, et al. A hemolytic transfusion reaction due to DEA 4 alloantibodies in a dog. J Vet Intern Med 2003;17(6):931-933.
5. Hale AS. Canine blood groups and their importance in veterinary transfusion medicine. Vet Clin North Am Small Anim Pract 1995;25(6):1323-1332.
6. Wardrop K. Clinical blood typing and crossmatching. In: Feldman BF, Zinkl JG, Jain NC, et al. Schalm’s veterinary hematology. 5th ed. Philadelphia, Pa: Lippincott Williams & Wilkins, 2000.
7. Blais MC, Berman L, Oakley DA, et al. Canine Dal blood type: a red cell antigen lacking in some Dalmatians. J Vet Intern Med 2007;21(2):281-286.
8. Giger U, Bucheler J, Patterson DF. Frequency and inheritance of A and B blood types in feline breeds of the United States. J Hered 1991;82(1):15-20.
9. Giger U, Kilrain CG, Filippich LJ, et al. Frequencies of feline blood groups in the United States. J Am Vet Med Assoc 1989;195(9):1230-1232.
10. Giger U, Griot-Wenk M, Bucheler J, et al. Geographical variation of the feline blood type frequencies in the United States. Fel Pract 1991;19:21-26.
11. Forcada Y, Guitian J, Gibson G. Frequencies of feline blood types at a referral hospital in the south east of England. J Small Anim Pract 2007;48(10):570-573.
12. Bucheler J, Giger U. Alloantilichamen tegen A- en B-bloedgroepen bij katten. Vet Immunol Immunopathol 1993;38(3-4):283-295.
13. Bucheler J. Fading kitten syndrome and neonatal isoerythrolysis. Vet Clin North Am Small Anim Pract 1999;29(4):853-870.
14. Weinstein NM, Blais MC, Harris K, et al. A newly recognized blood group in domestic shorthair cats: the Mik red cell antigen. J Vet Intern Med 2007;21(2):287-292.
15. Seth MWS, Jackson KV, Giger U. Comparison of gel column, card and cartridge techniques for DEA 1.1 blood typing of dogs, in Proceedings. 26e Annu ACVIM Forum 2008; 775.
16. Marino B. DMS Laboratories Inc, Flemington, NJ: E-mail communication, 2009.
17. Bijsluiter. RapidVet-H bloedgroepbepalingstests voor honden (06/2009) en katten (09/2008). DMS Laboratories, Inc, Flemington, NJ. www.rapidvet.com.
18. Kessler RJ, Reese J, Chang D, et al. Dog erythrocyte antigens 1.1, 1.2, 3, 4, 7, and Dal blood typing and cross-matching by gel column technique. Vet Clin Pathol 2010 .
19. Giger U. Bloedtypering en cross-matching om compatibele transfusies te verzekeren. In: Bonagura JD, ed. Kirk’s current veterinary therapy XIII. Philadelphia, Pa: WB Saunders, 2000;396-399.
20. Giger U. Bloed-typering en crossmatching. In: Bonagura JD, Twedt DC, eds. Kirk’s current veterinary therapy XIV. St. Louis, Mo: Saunders Elsevier, 2009;260-265.
21. Brown D, Vap LM. Principes van bloedtransfusie en crossmatching. In: Thrall MA, Baker DC, Campbell TW, et al., eds. Veterinaire hematologie en klinische chemie. Baltimore, Md: Lippincott Williams & Wilkins, 2004:795-798.